PCR跑胶，目的条带很亮，但是边沿不清楚，前后有拖尾现象，请教各位是什么原因？ 博凌科为-为你解答：1模板可能有降解，建议避免反复冻融，放置时间不能太长。模板的质量是最重要的。2抽提RNA时有污染，包括基因组DNA污染和蛋白质污染，需重 做抽提。3提高退火温度，减少非特异性扩增。4减少循环次数，减少非特异性扩增。5电泳缓冲液时间太长，ph值和盐离子浓度明显 改变。6电泳时电压不能太高，8V/cm。7一般来讲，基于promega和TaKaRa的PCR反应体系中，Mg和dNTP的浓度是相 匹配的，不需改动。8 加样量过大。过多的量会造成加样孔超载，从而导致拖尾和弥散，对于较大的DNA此现象更明显。9制胶过程中胶孔没 制好。10 EB没有冲洗干净。11模板混有基因组DNA，或模板中混有蛋白。12非特异反映。引物设计的不好，非特异，这种情 况容易出现非特异扩增造成有非特异性扩增带或拖尾现象。13电泳液用久了不换，电泳胶脏了。14扩增的条件不合适，一般退火温度低时容 易使引物在非特异位置结合引发扩增反应造成拖尾。针对以上情况，可以先提高退火温度试试，如果实在不行，再看看引物是不是合适。如果 内参可以扩出来，只能说明程序可能是适合的，但不能完全说明体系合适。体系内的各组分，如模板、dNTP、Mg离子、引物等都可能造成拖尾。先得考虑换了 那种成分。
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾 由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多。对策：减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶；减少dNTP的浓度；适当降低Mg2+浓度；增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度。琼脂糖的熔点在62？65°C之间，融化后在37°C下可维持液态数小时，30°C时凝固成胶。多用于对染色体DNA在凝胶内进行原位酶切及DNA片段回收。琼脂糖凝胶 由于孔径大常用于大分子蛋白质、DNA的分离。扩展资料：琼脂糖凝胶是依靠糖链之间的次级链如氢键来维持网状结构，网状结构的疏密依靠琼脂糖的浓度。一般情况下，它的结构是稳定的，可以在许多条件下使用（如水，pH4-9范围内的盐溶液）。琼脂糖凝胶在40℃以上开始融化，也不能高压消毒，可用化学灭菌活处理。把琼脂糖，即几乎不含硫酸根的主要成分为多糖的琼脂，溶于热水，冷却制成的凝胶。制成的小颗粒用于凝胶过滤。参考资料来源：-琼脂糖凝胶
全基因组DNA跑胶拖尾
提取的总RNA跑胶从大到小有几条带 提取的总RNA跑胶从大到2113小有带3条。三条是主带。哺乳动5261物的4102RNA包括mRNA，rRNA，tRNA和du小RNA，根据分子量和沉降系数1653的不同，rRNA又可分为28s，18s 和5.8s 的rRNA。从RNA的含量上看，rRNA是几种RNA中最多的，高达90%以上，而mRNA很少，只有1-2%，而其他两种RNA的分子量比较小，这就解释了为什么从凝胶电泳的结果上只能看到三条带。而这三条带的完整性，就代表了mRNA的完整性。扩展资料：RNA电泳可以在变性及非变性两种条件下进行。非变性电泳使用1.0%-1.4%的凝胶，不同的RNA条带也能分开，但无法判断其分子量。只有在完全变性的条件下，RNA的泳动率才与分子量的对数呈线性关系。因此要测定RNA分子量时，一定要用变性凝胶。在需快速检测所提总RNA样品完整性时，配制普通的1%琼脂 糖凝胶即可。
求教高手！！基因组DNA电泳现象：电泳图分析一下（分布不均的原因，移动速率的影响因素）还有偶的结果
琼脂糖凝胶电泳跑完，DNA条带颜色浅怎么回事？ 谁能解释一下胶浓度与DNA条带颜色深浅的关系？还有，有时也会出现条带模糊不清，弥散的现象。
为什么DNA跑胶DNA带会向负极？ 通过跑胶看看提取的DNA的长度，有没有很多断裂（跑胶后表现为拖尾严重），以及浓度（条带亮不亮），有没有RNA污染（表现为100bp一下还有一团一团的条带）
提取DNA后为什么要跑胶 通过跑胶看看提取的DNA的长度，有没有很多断裂（跑胶后表现为拖尾严重），以及浓度（条带亮不亮），有没有RNA污染（表现为100bp一下还有一团一团的条带）
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾？ 看里的答案里提到PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退…
