DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因是什么 电泳出现拖尾现象2113，英文成为smear，就是5261弥散.其原因，主要从以下两4102个方面考虑：1、PCR产物1653自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.③适当降低Mg2+浓度.④增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度.2、电泳体系的问题：（1）电泳缓冲液TAE或者TBE的污染，建议更换缓冲液.（2）上样时样品漂了，建议增加上样缓冲液的用量，以及小心加样.（3）电压太高.（4）适当把你的胶的浓度加大.（根据你的片断大小而定）（5）观察你的marker是否也存在拖尾现象，作为对照.以前有挺多人问过这个问题了 借用下以往问题的最佳答案
pcr产物在电泳仪中跑胶出现拖尾现象是怎么回事 有一下几种可能性：PCR扩增产物浓度很高，overloading造成的拖带模板量加太多了引物或者模板的原因，条带扩增的时候带入了很多杂带
提取动物组织DNA跑琼脂糖凝胶拖尾原因是什么？ 提取了鱼鳍组织DNA最左边是DL2000marker，后几个为样品，电压为120v，30min，百分之一的琼脂糖凝胶，上样…
PCR跑胶，目的条带很亮，但是边沿不清楚，前后有拖尾现象，请教各位是什么原因？ 博凌科为-为你解答：1模板可能有降解，建议避免反复冻融，放置时间不能太长。模板的质量是最重要的。2抽提RNA时有污染，包括基因组DNA污染和蛋白质污染，需重 做抽提。3提高退火温度，减少非特异性扩增。4减少循环次数，减少非特异性扩增。5电泳缓冲液时间太长，ph值和盐离子浓度明显 改变。6电泳时电压不能太高，8V/cm。7一般来讲，基于promega和TaKaRa的PCR反应体系中，Mg和dNTP的浓度是相 匹配的，不需改动。8 加样量过大。过多的量会造成加样孔超载，从而导致拖尾和弥散，对于较大的DNA此现象更明显。9制胶过程中胶孔没 制好。10 EB没有冲洗干净。11模板混有基因组DNA，或模板中混有蛋白。12非特异反映。引物设计的不好，非特异，这种情 况容易出现非特异扩增造成有非特异性扩增带或拖尾现象。13电泳液用久了不换，电泳胶脏了。14扩增的条件不合适，一般退火温度低时容 易使引物在非特异位置结合引发扩增反应造成拖尾。针对以上情况，可以先提高退火温度试试，如果实在不行，再看看引物是不是合适。如果 内参可以扩出来，只能说明程序可能是适合的，但不能完全说明体系合适。体系内的各组分，如模板、dNTP、Mg离子、引物等都可能造成拖尾。先得考虑换了 那种成分。
跑胶时为什么会拖带？ 试下降低模版浓度、减少循环次数，或是升高Tm值、增加引物特异性.拖带可能是以下原因：1：电压太高2：你的胶浓度太低3：非特异扩增4：回收时操作有问题，造成片段部分降解，所以条带弥散；
跑胶时有拖尾是怎么回事
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾？ 看里的答案里提到PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退…
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾 由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多。对策：减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶；减少dNTP的浓度；适当降低Mg2+浓度；增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度。琼脂糖的熔点在62？65°C之间，融化后在37°C下可维持液态数小时，30°C时凝固成胶。多用于对染色体DNA在凝胶内进行原位酶切及DNA片段回收。琼脂糖凝胶 由于孔径大常用于大分子蛋白质、DNA的分离。扩展资料：琼脂糖凝胶是依靠糖链之间的次级链如氢键来维持网状结构，网状结构的疏密依靠琼脂糖的浓度。一般情况下，它的结构是稳定的，可以在许多条件下使用（如水，pH4-9范围内的盐溶液）。琼脂糖凝胶在40℃以上开始融化，也不能高压消毒，可用化学灭菌活处理。把琼脂糖，即几乎不含硫酸根的主要成分为多糖的琼脂，溶于热水，冷却制成的凝胶。制成的小颗粒用于凝胶过滤。参考资料来源：-琼脂糖凝胶
pcr产物在电泳仪中跑胶出现拖尾现象是怎么回事？ 1.很可能是胶没煮好！煮的时候要沸腾三次，摇匀，不然胶的密度不均一。2.电压，电压过高也会拖带3.可以适当提高电泳槽里面的缓冲液浓度。4.如果还是不好，可以换一个稍微宽一点的梳子，一般效果会好很多。
pcr跑胶结果出现拖尾、弥散说明什么？ 拖尾可能是模板量太大；弥散可能是因为延伸时间不够。
