DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因是什么 电泳出现拖尾现象2113，英文成为smear，就是5261弥散.其原因，主要从以下两4102个方面考虑：1、PCR产物1653自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.③适当降低Mg2+浓度.④增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度.2、电泳体系的问题：（1）电泳缓冲液TAE或者TBE的污染，建议更换缓冲液.（2）上样时样品漂了，建议增加上样缓冲液的用量，以及小心加样.（3）电压太高.（4）适当把你的胶的浓度加大.（根据你的片断大小而定）（5）观察你的marker是否也存在拖尾现象，作为对照.以前有挺多人问过这个问题了 借用下以往问题的最佳答案
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾 由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多。对策：减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶；减少dNTP的浓度；适当降低Mg2+浓度；增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度。琼脂糖的熔点在62？65°C之间，融化后在37°C下可维持液态数小时，30°C时凝固成胶。多用于对染色体DNA在凝胶内进行原位酶切及DNA片段回收。琼脂糖凝胶 由于孔径大常用于大分子蛋白质、DNA的分离。扩展资料：琼脂糖凝胶是依靠糖链之间的次级链如氢键来维持网状结构，网状结构的疏密依靠琼脂糖的浓度。一般情况下，它的结构是稳定的，可以在许多条件下使用（如水，pH4-9范围内的盐溶液）。琼脂糖凝胶在40℃以上开始融化，也不能高压消毒，可用化学灭菌活处理。把琼脂糖，即几乎不含硫酸根的主要成分为多糖的琼脂，溶于热水，冷却制成的凝胶。制成的小颗粒用于凝胶过滤。参考资料来源：-琼脂糖凝胶
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾？ 看里的答案里提到PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退…
全基因组DNA跑胶拖尾 如果连MAKER都没有跑开，那就应该是胶的问题了.先把胶做好了再跑试试看 1%的琼脂糖凝胶跑DNA应该是可以的我感觉可能1 胶放置的时间不够 还没有完全凝固 因此跑的乱2.做胶的时候琼脂糖是否已经完全溶解了再倒的板子？这两个可能性最大
跑dna电泳出现拖尾现象，不知道为何？
DNA拖尾现象是什么原因 原因有以下：1、可以考虑是不是样品不纯，目的产物与杂带相差不大，所以要多跑一段时间才有尾巴。参考marker，marker应该不会有。如果有的话说明配胶有问题。2、琼脂糖检测DNA一般去1~5微升原液，加2微升溴酚蓝便可，注意上样浓度；3、可能是原液浓度太大造成的；4、可能DNA已降解。5、在提取前对样品进行一定的脱腐处理呀。很简单。有一种TENP buffer，文献中查的到的。6、DNA降解避免核酸酶污染。7、DNA上样量过多，可以减少凝胶中DNA上样量。8、所用电泳条件不合适，可以将电泳时电压不应超过20V/cm，温度℃，巨大DNA链，温度应℃，核查所用电泳缓冲液是否有足够的缓冲能力。9、DNA样含盐过高，可以在电泳前通过乙醇沉淀去除过多的盐。10、有蛋白污染，可以采用电泳前酚抽提去除蛋白。11、DNA变性，电泳前勿加热，用20mM NaCl缓冲液稀释DNA
全基因组DNA跑胶拖尾 如果连MAKER都没有2113跑开，那就应该是胶的问题了。先把5261胶做好了4102再跑试试看 1%的琼脂糖凝胶跑DNA应该是可以1653的我感觉可能1 胶放置的时间不够 还没有完全凝固 因此跑的乱2.做胶的时候琼脂糖是否已经完全溶解了再倒的板子？这两个可能性最大
