琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾 由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多。对策：减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶；减少dNTP的浓度；适当降低Mg2+浓度；增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度。琼脂糖的熔点在62？65°C之间，融化后在37°C下可维持液态数小时，30°C时凝固成胶。多用于对染色体DNA在凝胶内进行原位酶切及DNA片段回收。琼脂糖凝胶 由于孔径大常用于大分子蛋白质、DNA的分离。扩展资料：琼脂糖凝胶是依靠糖链之间的次级链如氢键来维持网状结构，网状结构的疏密依靠琼脂糖的浓度。一般情况下，它的结构是稳定的，可以在许多条件下使用（如水，pH4-9范围内的盐溶液）。琼脂糖凝胶在40℃以上开始融化，也不能高压消毒，可用化学灭菌活处理。把琼脂糖，即几乎不含硫酸根的主要成分为多糖的琼脂，溶于热水，冷却制成的凝胶。制成的小颗粒用于凝胶过滤。参考资料来源：-琼脂糖凝胶
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因是什么 电泳出现拖尾现象2113，英文成为smear，就是5261弥散.其原因，主要从以下两4102个方面考虑：1、PCR产物1653自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.③适当降低Mg2+浓度.④增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度.2、电泳体系的问题：（1）电泳缓冲液TAE或者TBE的污染，建议更换缓冲液.（2）上样时样品漂了，建议增加上样缓冲液的用量，以及小心加样.（3）电压太高.（4）适当把你的胶的浓度加大.（根据你的片断大小而定）（5）观察你的marker是否也存在拖尾现象，作为对照.以前有挺多人问过这个问题了 借用下以往问题的最佳答案
如何点评RNA跑胶图 提取完了用分光光度计能够测定浓度，跑胶主要看两个条带(18s，28s)都在，弥散多不多，从而判断RNA分子完整性。http：//www.labbase.net/News/ShowNewsDetails-2-11-0716260834924DD8.html核糖体RNA(ribosomal RNA，rRNA)是组成核糖体的主要成分。核糖体是合成蛋白质的工厂。在大肠杆菌中，rRNA量占细胞总RNA量的75%-85%，而tRNA占15%，mRNA仅占3-5%。rRNA一般与核糖体蛋白质结合在一起，形成核糖体（ribosome），如果把rRNA从核糖体上除掉，核糖体的结构就会发生塌陷。原核生物的核糖体所含的rRNA有5S、16S及23S三种。S为沉降系数（sedimentation coefficient），当用超速离心测定一个粒子的沉淀速度时，此速度与粒子的大小直径成比例。5S含有120个核苷酸，16S含有1540个核苷酸，而23S含有2900个核苷酸。而真核生物有4种rRNA，它们分子大小分别是5S、5.8S、18S和28S，分别具有大约120、160、1900和4700个核苷酸。RNA样品电泳后，可见28S、18S及5S小分子RNA条带，则说明完整性好。若有降解可能是操作不当或污染了RNase.28S和18S RNA比值约为2：1，表明RNA无降解。如比值逆转，则表明RNA降解。
全基因组DNA跑胶拖尾 如果连MAKER都没有2113跑开，那就应该是胶的问题了。先把5261胶做好了4102再跑试试看 1%的琼脂糖凝胶跑DNA应该是可以1653的我感觉可能1 胶放置的时间不够 还没有完全凝固 因此跑的乱2.做胶的时候琼脂糖是否已经完全溶解了再倒的板子？这两个可能性最大
