剖腹产三年每次来例假为什么伤口会疼？ 这个可能还是之前的伤口，局部的组织瘢痕形成，有增生的问题，那么会导致一些敏感的问题，另外的话，月经问题，可能导致体内激素的水平变化，那么也是可能的了，这个局部的。
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因是什么？
聚丙烯酰胺凝胶电泳中电极安装为什么是上负下？ 11．扫描。扫描操作见扫描仪的使用说明。编辑本段注意事项 1．在加过硫酸铵和TEMED之前溶液最好抽气，防止溶解在溶液里的分子氧在聚合时产生气泡使胶不均一。2．过硫酸铵和。
PCR产物跑电泳，泳道上有小月牙形痕迹是怎么回事有“尾巴”朝上和朝下两张情况。“尾巴”朝上：如果尾巴是弥散的，像雾一下，而你的目的条带又比较直，那么可能是你拿来作为模板的DNA加多了，而如果目的条带弯成了很明显的“微笑状”，那么可能是你的PCR产物太浓了。如果尾巴不是弥散的，而是有一条一条的杂带，那么可能是你的PCR不特异，需要提高退火温度或者换引物。“尾巴”朝下：朝下说明目的条带下面的“尾巴”比目的条带要小，这种情况一般不多见，多数是因为PCR产物降解造成的。模板里的RNA一般不会产生拖尾，大部分都降解了，或者含量比较低。建议下次把图拍了放上来，没图只能这样分析了~
请教sds-page高手 sds-page常见问题：⒈ 配胶缓冲液系统对电泳的影响？在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCL缓冲系统，浓缩胶是pH6.7，分离胶pH8.9；。
DNA拖尾现象是什么原因 原因有以下：1、可以考虑是不是样品不纯，目的产物与杂带相差不大，所以要多跑一段时间才有尾巴。参考marker，marker应该不会有。如果有的话说明配胶有问题。2、琼脂糖检测DNA一般去1~5微升原液，加2微升溴酚蓝便可，注意上样浓度；3、可能是原液浓度太大造成的；4、可能DNA已降解。5、在提取前对样品进行一定的脱腐处理呀。很简单。有一种TENP buffer，文献中查的到的。6、DNA降解避免核酸酶污染。7、DNA上样量过多，可以减少凝胶中DNA上样量。8、所用电泳条件不合适，可以将电泳时电压不应超过20V/cm，温度℃，巨大DNA链，温度应℃，核查所用电泳缓冲液是否有足够的缓冲能力。9、DNA样含盐过高，可以在电泳前通过乙醇沉淀去除过多的盐。10、有蛋白污染，可以采用电泳前酚抽提去除蛋白。11、DNA变性，电泳前勿加热，用20mM NaCl缓冲液稀释DNA
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾 由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多。对策：减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶；减少dNTP的浓度；适当降低Mg2+浓度；增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度。琼脂糖的熔点在62？65°C之间，融化后在37°C下可维持液态数小时，30°C时凝固成胶。多用于对染色体DNA在凝胶内进行原位酶切及DNA片段回收。琼脂糖凝胶 由于孔径大常用于大分子蛋白质、DNA的分离。扩展资料：琼脂糖凝胶是依靠糖链之间的次级链如氢键来维持网状结构，网状结构的疏密依靠琼脂糖的浓度。一般情况下，它的结构是稳定的，可以在许多条件下使用（如水，pH4-9范围内的盐溶液）。琼脂糖凝胶在40℃以上开始融化，也不能高压消毒，可用化学灭菌活处理。把琼脂糖，即几乎不含硫酸根的主要成分为多糖的琼脂，溶于热水，冷却制成的凝胶。制成的小颗粒用于凝胶过滤。参考资料来源：-琼脂糖凝胶
载体酶切产物电泳时检测胶上有条带，回收胶上却降解了，请教各位大虾这是怎么回事？ 一片亮，一般是样品处理或者配胶的时候不注意，混入了一些内切酶，或是电泳温度高，导致核酸降解，尤其是跑RNA电泳，很容易这样.建议用新胶，新TBC（TAC）重新跑一次，样品用醋酸铵重新纯化，电泳槽用缓冲液冲洗多次再用.另外.
谁能总结以下SDS-PAGE电泳常见问题的分析 哈哈，我做过这个论文哈。1.配胶缓冲液系统对电泳的影响？在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCL缓冲系统，浓缩胶是pH6.7，分离胶pH8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统.在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而CL离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分子就介于二者之间泳动.由于导电性与电场强度成反比，这一区带便形成了较高的电压剃度，压着蛋白质分子聚集到一起，浓缩为一狭窄的区带.当样品进入分离胶后，由于胶中pH的增加，呈碱性，甘氨酸大量解离，泳动速率增加，直接紧随氯离子之后，同时由于分离胶孔径的缩小，在电场的作用下，蛋白分子根据其固有的带电性和分子大小进行分离.所以，pH对整个反应体系的影响是至关重要的，实验中在排除其他因素之后仍不能很好解决问题的情况，应首要考虑该因素.2.样品如何处理？根据样品分离目的不同，主要有三种处理方法：还原SDS处理、非还原SDS处理、带有烷基化作用的还原SDS处理.1）还原SDS处理：在上样buffer中加入SDS和DTT（或Beta巯基乙醇）后，蛋白质构象被解离，电荷被中和，形成SDS与蛋白相结合的分子，在电泳中，只根据分子量来分离.一般电泳均按这种方式处理，样品稀释。
电泳DNA时，拖尾现象很严重，造成这种现象的原因有哪些？ 电泳出现拖尾现象，英文成为smear，就是弥散.其原因，主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.③适当降低Mg2+浓度.④增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度.2、电泳体系的问题：（1）电泳缓冲液TAE或者TBE的污染，建议更换缓冲液.（2）上样时样品漂了，建议增加上样缓冲液的用量，以及小心加样.（3）电压太高.（4）适当把你的胶的浓度加大.（根据你的片断大小而定）（5）观察你的marker是否也存在拖尾现象，作为对照.
