提取的总RNA跑胶从大到小有几条带
PCR跑胶，目的条带很亮，但是边沿不清楚，前后有拖尾现象，请教各位是什么原因？ 博凌科为-为你解答：1模板可能有降解，建议避免反复冻融，放置时间不能太长。模板的质量是最重要的。2抽提RNA时有污染，包括基因组DNA污染和蛋白质污染，需重 做抽提。3提高退火温度，减少非特异性扩增。4减少循环次数，减少非特异性扩增。5电泳缓冲液时间太长，ph值和盐离子浓度明显 改变。6电泳时电压不能太高，8V/cm。7一般来讲，基于promega和TaKaRa的PCR反应体系中，Mg和dNTP的浓度是相 匹配的，不需改动。8 加样量过大。过多的量会造成加样孔超载，从而导致拖尾和弥散，对于较大的DNA此现象更明显。9制胶过程中胶孔没 制好。10 EB没有冲洗干净。11模板混有基因组DNA，或模板中混有蛋白。12非特异反映。引物设计的不好，非特异，这种情 况容易出现非特异扩增造成有非特异性扩增带或拖尾现象。13电泳液用久了不换，电泳胶脏了。14扩增的条件不合适，一般退火温度低时容 易使引物在非特异位置结合引发扩增反应造成拖尾。针对以上情况，可以先提高退火温度试试，如果实在不行，再看看引物是不是合适。如果 内参可以扩出来，只能说明程序可能是适合的，但不能完全说明体系合适。体系内的各组分，如模板、dNTP、Mg离子、引物等都可能造成拖尾。先得考虑换了 那种成分。
怎样做RNA的琼脂糖凝胶电泳，RNA样品电泳后，可见28S、18S及5S小分子RNA条带，则说明完整性好。若有降解可能是操作不当或污染了RNae.28S和18SRNA比值约为2：1，表明RNA无。
提取动物组织DNA跑琼脂糖凝胶拖尾原因是什么？ 提取了鱼鳍组织DNA最左边是DL2000marker，后几个为样品，电压为120v，30min，百分之一的琼脂糖凝胶，上样…
求教高手！！基因组DNA电泳现象：电泳图分析一下（分布不均的原因，移动速率的影响因素）还有偶的结果 你的这个电泳图基本上都可以看到主条带，从上往下第一条很清晰的条带就是基因组DNA，这条条带除了二号基本是比较完整而明亮的，做下游操作基本没啥问题。二号不是没有，。
PCR实验过程中的注意事项 PCR产物的电泳检测时间 一般为48h以内，有些最好于当日电泳检测，大于48h后带型不规则甚至消失.PCR反应的关键环节有①模板核酸的制备，②引物的质量与特异性，③酶的质量及，④PCR循环条件.寻找原因亦应针对上述环节进行分析研究.酶切分析：根据PCR产物中限制性内切酶的位点，用相应的酶切、电泳分离后，获得符合理论的片段，此法既能进行产物的鉴定，又能对靶基因分型，还能进行变异性研究.分子杂交：分子杂交是检测PCR产物特异性的有力证据，也是检测PCR 产物碱基突变的有效方法.Southern印迹杂交：在两引物之间另合成一条寡核苷酸链(内部寡核苷酸)标记后做探针，与PCR产物杂交.此法既可作特异性鉴定，又可以提高检测PCR产物的灵敏度，还可知其分子量及条带形状，主要用于科研.斑点杂交：将PCR产物点在硝酸纤维素膜或尼膜薄膜上，再用内部寡核苷酸探针杂交，观察有无着色斑点，主要用于PCR产物特异性鉴定及变异分析.氯仿抽提掉蛋白质和其它细胞组份，用乙醇或异丙醇沉淀 核酸.提取的核酸即可作为模板用于PCR反应.一般临床检测标本，可采用快速简便的方法溶解细胞，裂解病原体，消化除去染色体的蛋白质使靶基因游离，直接用于PCR扩增.RNA模板提取一般采用异硫氰酸胍或蛋白酶K法，要防止RNase降解。
提取DNA后为什么要跑胶 通过跑胶看看提取的DNA的长度，有没有很多断裂（跑胶后表现为拖尾严重），以及浓度（条带亮不亮），有没有RNA污染（表现为100bp一下还有一团一团的条带）
有关质粒琼脂糖凝胶电泳图分析？ 这是提取质粒后刚做的琼脂糖凝胶电泳，但是老师没教我们怎么分析，我的是右数第3个泳道，第4个是marker，…
琼脂糖凝胶电泳跑完，DNA条带颜色浅怎么回事？ 谁能解释一下胶浓度与DNA条带颜色深浅的关系？还有，有时也会出现条带模糊不清，弥散的现象。
