DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因是什么 电泳出现拖尾现象2113，英文成为smear，就是5261弥散.其原因，主要从以下两4102个方面考虑：1、PCR产物1653自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.③适当降低Mg2+浓度.④增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度.2、电泳体系的问题：（1）电泳缓冲液TAE或者TBE的污染，建议更换缓冲液.（2）上样时样品漂了，建议增加上样缓冲液的用量，以及小心加样.（3）电压太高.（4）适当把你的胶的浓度加大.（根据你的片断大小而定）（5）观察你的marker是否也存在拖尾现象，作为对照.以前有挺多人问过这个问题了 借用下以往问题的最佳答案
跑dna电泳出现拖尾现象，不知道为何？ 你的2113情况，应该从以下两个方面找原因：1.一般来说，5261marker除了能检测DNA的分子4102质量外，还可以侧面1653反应你的胶是否制的成功，从你的图上看，胶的问题比较大一些，胶的浓度和你溶胶的时间以及最后的溶解情况都有一些关系，跑过pcr后分子大小等出现了变化，也可能是受到了空气的污染等，为了检测你的maker是否有问题，可以在同块胶上点上别的MAKER，或者请别人帮你制胶后再跑一下。2.镁离子的浓度问题，镁离子浓度不合适本身就很容易拖尾，前8个样在跑PCR的时候都加了镁离子，而总DNA没有，这也是他们的区别，也可以从这点找找原因。
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA和Marker都出现拖尾，这是什么原因导致的，怎么改进呢？ 如图，从右到左依次是4ul marker和9ulDNA，DNA条带很浅，为什么会出现这些情况呢？
用PAGE胶跑DNA 首先原理差不多，具体细节2113差异还是有的。5261跑DNA的话，可以参见 人家做AFLP的protocol，当然也要看4102你想分1653离的片断大小咯。两者都要用到丙烯酰胺、甲叉丙烯酰胺、TEMED、APS（10%）但是跑DNA一般用 TBE（Tris、硼酸、EDTA），还含尿素用于western的蛋白胶多用 Tris-HCl，SDS buffer。蛋白较一般有分离胶和浓缩胶。浓度看分离的东西；上样量的话其实没法比较，染色的方法不一样，DNA银染的话少上点，具体多少我也记不清了，自己查一下吧；如果说是上样体积，看你的梳子大小咯电压：AFLP要求DNA要预电泳，冲洗掉尿素后再插梳子，60W 2h；当二甲苯青跑到底部约1/3处终止电泳。DNA的loading buffer含染料 溴酚蓝、二甲苯青等来指示跑到哪里呢。
求助啊，DNA跑PAGE跑不下来
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾？ 看里的答案里提到PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退…
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾 由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多。对策：减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶；减少dNTP的浓度；适当降低Mg2+浓度；增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度。琼脂糖的熔点在62？65°C之间，融化后在37°C下可维持液态数小时，30°C时凝固成胶。多用于对染色体DNA在凝胶内进行原位酶切及DNA片段回收。琼脂糖凝胶 由于孔径大常用于大分子蛋白质、DNA的分离。扩展资料：琼脂糖凝胶是依靠糖链之间的次级链如氢键来维持网状结构，网状结构的疏密依靠琼脂糖的浓度。一般情况下，它的结构是稳定的，可以在许多条件下使用（如水，pH4-9范围内的盐溶液）。琼脂糖凝胶在40℃以上开始融化，也不能高压消毒，可用化学灭菌活处理。把琼脂糖，即几乎不含硫酸根的主要成分为多糖的琼脂，溶于热水，冷却制成的凝胶。制成的小颗粒用于凝胶过滤。参考资料来源：-琼脂糖凝胶
