抑菌试验中怎样制作符合要求的菌悬液？ 操作步骤l．编号取无菌平皿9套，分别用记号笔标明10-1-10-9.另取6支盛有4.5mL无菌水的试管，依次标是10-1-10-9.2．稀释用lmL无菌吸管吸取lmL已充分混匀的大肠杆菌菌县液(待测样品)，精确地放0.5mL至10-1的试管中，此即为10倍稀释.将多余的菌液放回原菌液中.将10-1试管置试管振荡器上振荡，使菌液充分混匀.另取一支lml吸管插入10 1试管中来回吹吸菌悬液三次，进一步将菌体分散、混匀.吹吸菌液时不要太猛太快，吸时吸管伸人管底，吹时离开液面，以免将吸管中的过滤棉花浸湿或使试管内液体外溢.用此吸管吸取10-1菌液lmL，精确地放0.5mL至10-2试管中，此即为100倍稀释.其余依次类推.放菌液时吸管尖不要碰到液面，即每一支吸管只能接触一个稀释度的菌悬液，否则稀释不精确，结果误差较大.3．取样用9支1mL无菌吸管分别吸取10-1至10-9的稀释菌悬液各lmL，对号放入编好号的无菌平皿中，每个平皿放0.2mL.不要用lmL吸管每次只靠吸管尖部吸0.2mL稀释菌液放入平皿臼，这样容易加大同一稀释度几个重复平板间的操作误差.4．倒平板尽快向上述盛有不同稀释度菌液的平皿中倒入融化后冷却至45℃左右的牛肉膏蛋白胨培养基约15mL/平皿，置水平位置迅速旋动平皿，使培养基与菌液混合均匀，而又不使培养基荡出。
做抑菌试验中用到的牛津杯具体的用法如何？求高人指点 操作方抄法是：将已灭菌的琼脂bai培养基加热到完全融化，倒在du培养皿内，每皿15ml（下层），待其凝zhi固。此外，将融化的培dao养基冷却到500C左右混入试验菌，将混有菌的培养基5 ml加到已凝固的培养基上待凝固（上层）。在培养基表面垂直放上牛津杯，在杯中加入待检样品，加满后在370C培养16~18小时。在培养中，一方面试验菌开始生长另一方面抗生素呈球面扩散，离杯越近，抗生素浓度越大，离杯越远抗生素浓度越小。随着抗生素浓度减小，有一条最低抑菌浓度带，在带范围内，菌不能生长，而呈透明的圆圈，这就叫“抑菌圈”。抗生素浓度越高，抑菌圈越大.
做微生物抑菌实验时，其中有一步骤是制备菌悬液，我稀释菌液10倍，100倍，1000倍等浓度梯度 做药敏试验所需菌悬液的浓度是0.5个麦氏比浊度.而这个浓度并不是通过血球计数板获得的，而是通过麦氏比浊管肉眼观或者比浊仪比出来的.0.5个麦氏比浊度大概就是淡淡的一点浑浊，这样描述可能你体会不出来，如果你亲自见.
