T4DNA连接酶的作用机制 T4DNA连接酶作用机制：分子生物学试验中主要采用T4DNA连接酶，因该酶在正常条件下，即能完成连接反应。T4
试述分子生物学检验在临床诊断中意义 试述分子生物学检验在临床诊断中意义 将分子生物学技术应用到临床检验诊断学，使疾病诊断深入到基因水平，称为基因诊断。。
酶切问题！！这种情况怎么判断酶切成功？？ 环状bai质粒的拓扑结构并du不固定，一般来说环状质粒电泳速zhi度要比线性的快，dao但内其移动速度并不是一容定的，所以有可能出现你遇到的情况。其实，要验证酶切是否有效很简单，只需实验时再加一个对照，用BamHI和另外一个已知位点的限制性内切酶进行双酶切，电泳查看DNA条带是否和预测的条带相符即可（双酶切至少会生成两个以上的DNA条带，所以便于检验）。
简述人类基因组计划的主要内容和意义是什么？ 人类基因组计划（Human Genome Project，简称HGP）HGP的研究内容 HGP的主要任务是人类的DNA测序，包括下图所示的四张谱图，此外还有测序技术、人类基因组序列变异、功能。
怎么对提取质粒进行鉴定？ 首先跑一个琼脂糖凝胶电泳，观察一下带型和大小是否符合，然后根据质粒所含有的酶切位点，选择合适的限制性内切酶进行单酶切或双酶切，观察酶切后的条带数和大小是否与理论。
虚心求教：怎样能知道一个基因中有哪些限制性酶切位点？当我们扩增cDNA时，需要在序列两端加上限制性酶切位点，那怎样才能知道所加的酶切位点在基因中不存在，从而保证基因。
限制酶识别的碱基序列应该怎样读？还请以后把问题写的更详细一些，我们回答问题的都不厌其烦的耐心解释，但是问题不清楚的话，往往最后浪费大家的时间。。
双酶切体系一般怎么优化 AFLP（amplifiedfragment length polymorphism，扩增片段长度多态性）是由荷兰科学家Vos和Zabeau发明的一种十分有效的分子标记技术。其基本原理是：基因组DNA经两种限制性内切酶酶切，形成分子量大小不等的限制性酶切片段，然后把酶切片段与有共同粘性末端的人工接头连接，连接后的粘性末端序列和接头序列作为PCR反应引物的结合位点，通过PCR 反应对酶切片段进行预扩增和选择性扩增。选择性扩增产物在高分辨率的变性聚丙烯酰胺凝胶上电泳，寻找多态性扩增片段。由此可见，AFLP实际上是一种RFLP（限制性内切酶长度多态性）和RAPD（随机扩增多态性DNA）相结合的技术，既有RFLP的可靠性，又有RAPD 的灵敏性，并且多态性丰富，重复性好。然而，由于该技术涉及到DNA限制性内切酶的酶切、接头的连接、PCR扩增及变性聚丙烯酰胺凝胶电泳分析等诸多步骤，试验过程中不论哪个环节出现问题，都不会得到理想结果。因此，对试验中各个环节可能出现的问题加以分析和解决，将有力地保证试验的顺利进行。在此，本文就自身试验中的切身体会结合有关资料，对APLP技术中的常见问题作简要探讨，以资参考。1、模板DNA的制备对于AFLP而言，模板DNA的制备是非常重要的一个基础环节，它的。
如何在引物中加入HindⅢ和BamHI酶切位点 先设计好正反引物，顺序是5’到抄3’，分别在5’端加上hindIII和BamHI的酶切袭位点就可以了。比如：正向引百物F：AAGCTT-atgcatgctgcatgcatgc反向引物R：GGATCC-catgcatgatgcacatgcta按照试验的具体情况，还可以在前面加上保护度碱基，这个问你在网上可以搜到。如果连T载体再酶切的话，就没什么必要了。祝你好运答！
DNA限制酶切和琼脂糖凝胶电泳中常说的Marker是什么？还有Loading Dye 在实验中起到什么作用？ 1.marker是分子量标准 你要知道电泳时 分子量越小的跑得越快 这样的你的酶切产物电泳后形成的条带 就可以对照marker知道是多大分子量的了2.loading dye 一般用溴酚蓝或二甲苯青 和混在上样缓冲液里 和 样品一起点到点样孔中，电泳过程中 dye也会往前移动。在特定浓度的凝胶里 dye的迁移率会和特定的分子量dna速度一样。目的是为了知道电泳跑到什么时候可以停止，起指示作用的。否则一大块胶 没有指示dye，你也不知道改跑到什么时候 还得跑跑就得紫外照照
