western 内参用的GAPDH 和B-actin蛋白的分子量是多少 western 内参用的GAPDH分子2113量为146KD，检测5261条带大约在36kD，B-actin分子量为42KD。严谨的Western Blot实验设4102计中要求有良好的参照体1653系，这对实验结果分析是非常有用。要用Western Blot比较不同条件下或者不同组织中，目的蛋白表达量的相对多少，前提条件是等量的细胞上样，才有比较的基础。特别表达量不高时，上样量的差别就很可能影响结果的分析。因此需要内参很重要。
核蛋白，胞浆蛋白，膜蛋白做WB 用什么做内参抗体
什么是胞浆蛋白，做WB时用什么做内参？ =胞浆蛋白就是胞浆里的蛋白啊…用普通的提取方法就好了，网上一搜一大堆…做胞浆蛋白的话，WB的内参一般为β-actin或者GAPDH，主要还是要看你的细胞表达哪一个。
western blot 内参 actin 是43还是45 kda
检测细胞浆蛋白能用actin当内参么 可以，actin/tublin/GAPDH，都行，因为，目标的胞浆蛋白，但是，现在的技术是无法获取完全的胞浆蛋白，还是要用总蛋白，既然要用总蛋白，那么，以上提到的内参都行、
在电泳时为什么目的条带出来了，但内参却做不出来呢？ 首先看内参是不是选择合适，比如胞浆或者总蛋白白应该选择（beta-Actin或者Tubulin），核蛋白应该是选择Lamin等等，其次是确定你的内参抗体有没有问题，稀释度是否恰当，二抗种属是否用对了，诸如此类吧
在WB中心肌细胞蛋白应该用什么做内参 要检测一个基因的表达产物是否正确，或者比较表达产物量的相对变化，首选方法是Western Blot。因为Western Blot操作相对简单方便，既可以定性分析表达产物，同时还可以指示目的蛋白量的相对变化。虽然，顺利的时候Western Blot做起来很简单，可不顺的时候也很令人心烦――做不出结果啦、假阳性啦、结果出现多条带啦、到底是一抗有问题还是二抗有问题啦…毕竟，作为一种有活性的生物大分子，抗体和抗原的反应毕竟不象1+1那么明确，而用这种不确定的试剂来测定同样知之甚少的表达产物，确实是有一定的不确定性的。所以，严谨的Western Blot实验设计中要求有良好的参照体系，对实验结果分析是非常有用。特别是当实验出现问题时，借助参照体系很容易就可以查出问题所在，而不必抓耳挠腮怨天尤人。良好的参照体系通常包括分子量Marker（用来确定蛋白条带对应的分子量大小）、空白载体对照（如果是诱导表达体系还应该有诱导前的对照）、已知量标准产物的正对照，另外还有内参。可是由于经费限制或者偷懒的原因，国内的不少人做Western Blot往往省略参照，导致结果出现问题时无法分析结果，即便有结果也可能影响结果的分析。内参即是内部参照（Internal Control），对于哺乳动物细胞。
什么是胞浆蛋白，做WB时用什么做内参？ 胞浆蛋白就是胞浆里的蛋白啊…用普通的提取方法就好了，网上一搜一大堆…做胞浆蛋白的话，WB的内参一般为β-actin或者GAPDH，主要还是要看你的细胞表达哪一个。
